相關(guān)介紹:
Ni-TED瓊脂糖凝膠FF以瓊脂糖微球?yàn)榛|(zhì),通過活化偶聯(lián)三羧甲基乙二胺(TED),再螯合Ni2+。與亞氨基二乙酸(IDA)相比,Ni-TED瓊脂糖凝膠FF具有很好的螯合劑、還原劑、堿性的耐受性,如樣品中含有10-100mM EDTA或10-100mM β-巰基乙醇或5-20mM DTT,均可正常純化;無需脫鎳,也可以用1M NaOH再生清洗。
Ni-TED瓊脂糖凝膠FF主要用于純化帶組氨酸標(biāo)簽(His-Tag)的重組蛋白。純化原理是利用重組蛋白組氨酸標(biāo)簽的咪唑環(huán)可與過渡金屬Ni2+形成穩(wěn)定的配位鍵,因此能特異、牢固、可逆地吸附于固定這些金屬離子的基質(zhì),結(jié)合了His-Tag重組蛋白的Ni-TED瓊脂糖凝膠FF一般通過增加咪唑濃度進(jìn)行競爭洗脫。
技術(shù)指標(biāo):
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基質(zhì)
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6%瓊脂糖凝膠
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配基
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-N(CH2COOH)CH2CH2N(CH2COOH)2
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配基密度
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≥30 μmol/ml
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填料粒徑
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60~180 μm
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最大流速
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800 cm/h
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推薦流速
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50-100 cm/h
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pH穩(wěn)定性
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pH 3-12(清洗pH 2-14)
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耐反壓
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0.3 MPa
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載量
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≥20 mg His-tag重組蛋白/ml
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使用方法:
1、色譜柱裝填
(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。
(2)在柱子下端加入蒸餾水,以除去柱子中的空氣,關(guān)閉柱子出口,在柱內(nèi)保留少量的蒸餾水。
(3)將瓊脂糖凝膠連續(xù)倒入柱子時,要用玻璃棒的緊靠柱子內(nèi)壁引流,以減少氣泡的產(chǎn)生,讓填料先自然沉降。
(4)柱壓不超過0.3MPa,如果裝柱系統(tǒng)中無法測柱壓,則正常流速下填裝。
(5)填裝好的Ni-TED瓊脂糖凝膠FF柱用2-5個柱體積的初始緩沖溶液平衡,建議流速100cm/h,平衡后的柱子可以用于His-Tag重組蛋白的上樣和洗脫純化。
2、上樣
(1)緩沖液選擇:一般選用pH6-8的結(jié)合緩沖液,常用緩沖液有10-00mM 磷酸鈉緩沖液、20-200mM Tris-HCl緩沖液等。在緩沖液中一般要加入0.15-0.5M的NaCl,以消除離子交換作用。在初次使用Ni-TED瓊脂糖凝膠FF,推薦使用50mM PBS(50 mM NaH2PO4,0.5M NaCl,NaOH調(diào)節(jié)pH 7.4)作為結(jié)合緩沖液。
(2)樣品處理:樣品的緩沖液應(yīng)與所選結(jié)合緩沖液一致。為保證緩沖液一致,可以在結(jié)合緩沖液中破碎細(xì)菌、或調(diào)解pH與結(jié)合緩沖液一致、或交換至結(jié)合緩沖液(常用方法有透析、超濾、脫鹽柱換液等)、或用結(jié)合緩沖液稀釋2-10倍等。樣品上柱前應(yīng)0.45μm過濾。
3、洗脫
(1)Ni-TED瓊脂糖凝膠FF最常用的洗脫方法為增加咪唑濃度進(jìn)行洗脫。
(2)咪唑?yàn)閴A性,相應(yīng)緩沖液配制后需要用HCl進(jìn)行調(diào)節(jié)pH。
(3)在初次使用Ni-TED瓊脂糖凝膠FF,不知道洗脫的咪唑濃度,建議在結(jié)合緩沖液中分別加入10mM、20mM、50mM、100mM、200mM、500mM咪唑,濃度從低到高,分別洗脫和收集,通過SDS-PAGE電泳等方法鑒定洗脫組份。
(4)有條件的也可以進(jìn)行線性咪唑梯度洗脫,確定較佳洗脫條件。
4、在位清洗
使用完的層析柱出現(xiàn)堵塞、壓力增大、流速減慢、載量下降等情況時,就需要進(jìn)行在位清洗。Ni-TED瓊脂糖凝膠FF的優(yōu)勢為無需脫鎳即可用1M NaOH再生清洗,所以清洗最常用的方法:使用完的層析柱用蒸餾水清洗3-5個柱體積,然后用1M NaOH清洗3-5個柱體積(保持時間0.5-1h),然后用蒸餾水清洗至中性即可。同其它層析介質(zhì)一樣,為了達(dá)到更好的清洗目的,可以采用反向清洗;如需去除熱源,可在1M NaOH中保持更長時間(1-2h)。
除了NaOH清洗外,強(qiáng)電荷蛋白可以用1-2M NaCl進(jìn)行清洗;脂類、脂蛋白、強(qiáng)疏水蛋白可以用30%異丙醇(或70%乙醇)進(jìn)行清洗。