相關介紹:
Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF以瓊脂糖微球為基質,通過活化偶聯次氮基三乙酸(NTA),再螯合Ni2+。與亞氨基二乙酸(IDA)相比,具有更好的螯合劑、還原劑、堿性的耐受性,如樣品中含有1-10mM EDTA或1-10mM β-巰基乙醇或5mM DTT,可正常純化;在螯合鎳的情況下,也可以用0.1M NaOH清洗。
Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF主要用于純化帶組氨酸標簽(His-Tag)的重組蛋白。純化原理是利用重組蛋白組氨酸標簽的咪唑環可與過渡金屬Ni2+形成穩定的配位鍵,因此能特異、牢固、可逆地吸附于固定這些金屬離子的基質,結合了His-Tag重組蛋白的Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF一般通過增加咪唑濃度進行競爭洗脫。
技術指標:
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基質
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4%瓊脂糖凝膠
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配基
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-N(CH2COOH)3
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配基密度
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≥15 μmol/ml
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填料粒徑
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60~180 μm
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最大流速
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800 cm/h
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推薦流速
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50-100 cm/h
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pH穩定性
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pH 5-12,pH 3~13
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耐反壓
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0.3 MPa
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載量
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≥20 mg His-tag重組蛋白/ml
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使用方法:
1、色譜柱裝填
(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。
(2)在柱子下端加入蒸餾水,以除去柱子中的空氣,關閉柱子出口,在柱內保留少量的蒸餾水。
(3)將瓊脂糖凝膠連續倒入柱子時,要用玻璃棒的緊靠柱子內壁引流,以減少氣泡的產生,讓填料先自然沉降。
(4)柱壓不超過0.3MPa,如果裝柱系統中無法測柱壓,則正常流速下填裝。
(5)填裝好的Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF柱用2-5個柱體積的初始緩沖溶液平衡,建議流速100cm/h,平衡后的柱子可以用于His-Tag重組蛋白的上樣和洗脫純化。
2、上樣
(1)緩沖液選擇:一般選用pH6-8的結合緩沖液,常用緩沖液有10-00mM 磷酸鈉緩沖液、20-200mM Tris-HCl緩沖液等。在緩沖液中一般要加入0.15-0.5M的NaCl,以消除離子交換作用。在初次使用Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF,推薦使用50mM PBS(50 mM NaH2PO4,0.5M NaCl,NaOH調節pH 7.4)作為結合緩沖液。
(2)樣品處理:樣品的緩沖液應與所選結合緩沖液一致。為保證緩沖液一致,可以在結合緩沖液中破碎細菌、或調解pH與結合緩沖液一致、或交換至結合緩沖液(常用方法有透析、超濾、脫鹽柱換液等)、或用結合緩沖液稀釋2-10倍等。樣品上柱前應0.45μm過濾。
3、洗脫
(1)Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF最常用的洗脫方法為增加咪唑濃度進行洗脫。
(2)咪唑為堿性,相應緩沖液配制后需要用HCl進行調節pH。
(3)在初次使用Ni-NTA瓊脂糖凝膠FF,不知道洗脫的咪唑濃度,建議在結合緩沖液中分別加入10mM、20mM、50mM、100mM、200mM、500mM咪唑,濃度從低到高,分別洗脫和收集,通過SDS-PAGE電泳等方法鑒定洗脫組份。
(4)有條件的也可以進行線性咪唑梯度洗脫,確定較佳洗脫條件。
4、在位清洗
在多次使用后需要在位清洗,常用方法為先5個柱體積蒸餾水清洗,再用1-3個柱體積50mM NaOH清洗10-20min,立即用5個柱體積結合緩沖液(50mM PBS)清洗平衡。