相關(guān)介紹:
Strep-Tactin瓊脂糖凝膠FF是一種將Strep-Tactin鍵合在瓊脂糖凝膠微球上形成的生物親和層析分離介質(zhì),主要用于純化Strep II標(biāo)簽蛋白。Strep II標(biāo)簽為8個(gè)氨基酸的小標(biāo)簽(WSHPQFEK),由于標(biāo)簽小,僅為1 kDa左右,一般不影響融合后蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和功能,常用于融合表達(dá)蛋白質(zhì)的檢測(cè)和純化。
本產(chǎn)品的配基Strep-Tactin是鏈霉親和素(Streptavidin)的突變體,與鏈霉親和素相比,Strep-Tactin對(duì)Strep II標(biāo)簽的親和能力至少?gòu)?qiáng)10倍以上,能夠在溫和的條件下與Strep II融合蛋白結(jié)合和解離。由于Strep-Tacin對(duì)Strep II標(biāo)簽具有高度特異性,一般一步純化就能獲得高純度的蛋白質(zhì)樣品。
Strep II標(biāo)簽蛋白與凝膠結(jié)合后可使用脫硫生物素競(jìng)爭(zhēng)方式進(jìn)行洗脫,該洗脫方式比較溫和,一般不會(huì)影響蛋白質(zhì)的性質(zhì)。如Strep II標(biāo)簽蛋白質(zhì)能耐受堿性條件,也可用堿液洗脫,比如10 mM NaOH等。
Strep-Tactin瓊脂糖凝膠FF能耐受較高的堿性條件,可以用0.5 M NaOH進(jìn)行再生清洗和去除熱源等。
另外,2-(4-羥基苯唑)苯甲酸(HABA)也可用于凝膠再生,過(guò)量的HABA能以競(jìng)爭(zhēng)的方式替換脫硫生物素,但在無(wú)HABA的緩沖液中, Strep-Tactin與HABA會(huì)發(fā)生解離,從而使HABA脫落,實(shí)現(xiàn)再生。
技術(shù)指標(biāo):
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基質(zhì)
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4%瓊脂糖凝膠微球
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配基
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Strep-Tactin
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配基密度
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≥5 mg/ml
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填料粒徑
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60 ~ 180 μm
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最大流速
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800 cm/h
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推薦流速
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20 ~ 100 cm/h
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pH穩(wěn)定性
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短時(shí)間pH 2 ~ 13;長(zhǎng)時(shí)間pH 4 ~ 11
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耐反壓
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0.3 MPa
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載量
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≥6 mg/ml Strep II標(biāo)簽蛋白
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使用方法:
1 推薦緩沖液
純化Strep II標(biāo)簽蛋白
結(jié)合緩沖液:100 mM Tris-HCl,150 mM NaCl,1 mM EDTA,pH 8.0;
或20 mM NaH2PO4,280 mM NaCl,6 mM KCl,pH 7.4
洗脫緩沖液:結(jié)合緩沖液 + 2.5 mM 脫硫生物素;
或10 mM NaOH
再生緩沖液:0.5 M NaOH;
或結(jié)合緩沖液+1 mM HABA
2 樣品準(zhǔn)備
上柱的樣品應(yīng)盡量保持與結(jié)合緩沖液一致。通常可用透析、超濾、稀釋等方法處理樣品。并且上柱前應(yīng)過(guò)0.45 μm濾膜或高速離心去除不溶物。
3 樣品純化
3.1 平衡:取適量的Strep-Tactin瓊脂糖凝膠FF裝入合適的層析柱中,用蒸餾水清洗5個(gè)柱體積去除保存液,再用結(jié)合緩沖液平衡5個(gè)柱體積,建議流速為100 cm/h。
3.2 上樣:將準(zhǔn)備好的樣品上柱,建議流速為20 ~ 100 cm/h,可根據(jù)實(shí)際結(jié)合情況選擇流速,能獲得較好的效果。
3.3 再平衡:上樣后用結(jié)合緩沖液平衡10個(gè)柱體積以上,或平衡至基線,洗去雜質(zhì),推薦流速為100 cm/h。
3.4 洗脫:用洗脫緩沖液洗10 ~ 20個(gè)柱體積,建議流速為100 cm/h,收集的洗脫液應(yīng)立即調(diào)節(jié)pH至穩(wěn)定范圍,并根據(jù)需要置換緩沖液。
3.5 NaOH再生:洗脫目的蛋白后的柱子用蒸餾水清洗3 ~ 5個(gè)柱體積,并用0.5 M NaOH再生3 ~ 5個(gè)柱體積,再用蒸餾水清洗至中性,用20%乙醇保存柱子,或進(jìn)行下一次純化。
3.6 HABA再生:用脫硫生物素洗脫目的蛋白的,還可以用HABA緩沖液再生,一般用HABA的結(jié)合緩沖液洗15個(gè)柱體積,再用結(jié)合緩沖液洗30個(gè)柱體積,然后可以用20%乙醇保存柱子,或進(jìn)行下一步純化。HABA上柱后凝膠顏色會(huì)變?yōu)榧t橙色,在結(jié)合緩沖液平衡后會(huì)恢復(fù)正常的白色,這種再生方式一般使用體積會(huì)大些。